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膜片钳技术研究大麻素/食欲素通路干预海马神经元放电机制

发布时间:2024-03-26 04:29
  目的采用膜片钳技术研究大麻素、食欲素受体通路对海马CA1区锥体神经元放电的影响及可能的作用机制。方法将出生15-20天的Wistar大鼠取脑,急性分离出单个CA1区锥体神经元,用膜片钳技术记录神经元电活动,观察非选择性大麻素受体激动剂Win55212-2、非选择性食欲素受体激动剂Orexin A对神经元静息电位、自发发放频率等影响。在大麻素实验中,根据神经元对Win55212-2的反应分为超极化组和去极化组;在食欲素实验中,根据神经元自身放电频率,将其分为低频组和高频组。采用MTT染色法验证组织切片及神经元活性。结果第一部分(大麻素实验组):给予大麻素受体激动剂Win55212-2,与给药前比较,给药期间超极化组神经元动作电位频率减少、膜电位显著降低[0 Hz vs. (4.3 ±3.2)Hz,p<0.05;(-57.0±4.6)mVvs. (-54.1 ±3.8)mV,p<0.01];与给药期间比较,停止给药后神经元动作电位频率增加、膜电位升高,差异有统计学意义(p<0.01)。与给药前比较,给药期间去极化组神经元动作电位频率显著减少[0 Hz vs. (6.2 ±...

【文章页数】:36 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

图1.提取细胞所用海马组织活性检测图1A?.?MTT染色的海马组织,用于提取??

图1.提取细胞所用海马组织活性检测图1A?.?MTT染色的海马组织,用于提取??

2.1脑片MTT染色??脑片外观完整,着色纹理自然且与脑组织结构分布相一致,获取细胞标本的??脑组织定位在CA1区锥体细胞层(图1)。??图1.提取细胞所用海马组织活性检测图1A?.?MTT染色的海马组织,用于提取??细胞的CA1区锥体细胞层组织部位(箭头所示)图1B.剖面图示图....


图2.?\Vin55212-2致神经元超极化/去极化基本特性散点图图2A.静息电位散点??图图2B.自发发放频率散点图2C.半值宽度散点图图2D.峰值和谷值散点图??

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0??-80??图2.?\Vin55212-2致神经元超极化/去极化基本特性散点图图2A.静息电位散点??图图2B.自发发放频率散点图2C.半值宽度散点图图2D.峰值和谷值散点图??注:蓝色代表超极化组,红色代表去极化组;菱形代表峰值,三角形代表谷值??与给药前比较,给药期间超极....


图4.?Win55212-2致神经元去极化典型图例?图4A.?Win552I2-2抑制神经元放??电,且其作用完全被选杼性CBR1拮抗剂AM251拮抗图4B.神经元相差显微镜??

图4.?Win55212-2致神经元去极化典型图例?图4A.?Win552I2-2抑制神经元放??电,且其作用完全被选杼性CBR1拮抗剂AM251拮抗图4B.神经元相差显微镜??

与给药期间比较,停止给药后的神经元膜电位显著降低,动作电位频率显著增加,??差异有统计学意义(P<〇.〇5);给药前与停止给药后比较,神经元膜电位及动作电??位频率相差不大,差异无统计学意义(P>〇.〇5,图4,表2)。??AM251??A?Win55212-2?Win55212....


图5.?TEA对Win55212-2的影响?图5A.单独应用Win55212-2,神经元表现为??,Win55212-2+TEA,?TEAWin55212-2

图5.?TEA对Win55212-2的影响?图5A.单独应用Win55212-2,神经元表现为??,Win55212-2+TEA,?TEAWin55212-2

?D?20mV|?0.5s??-52?mV??图5.?TEA对Win55212-2的影响?图5A.单独应用Win55212-2,神经元表现为??超极化,联合应用Win55212-2+TEA,?TEA几乎完全逆转Win55212-2的作用图??5B.神经元相差显微镜像图5C.应用W....



本文编号:3939363

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